2.1. 시약 및 재료

Imicyafos 표준품(91%)은 (주)경농연구소에서 제공 받았고, acetonitrile과 acetone, dichloromethane, n-hexane은 HPLC grade로써 Merck (Darmstadt, Germany)에서 구입하여 사용하였으며, sodium chloride와 sodium sulfate anhydrous는 Wako (Osaka, Japan) 사의 제품을 사용하였다. Florisil (60-100 mesh)은 Sigma-Aldrich(St. Louis, MO, USA)로부터 구입하여 사용하였다.

검체는 기준이 설정된 농산물인 수박, 참외 외에 대표 작물인 감귤(과일류), 고추(채소류), 감자(서류), 대두(콩류), 그리고 현미(곡류)를 구입하여 균질화한 후 폴리에틸렌 용기에 담아 -50 ^oC에 보관하고 실험에 사용하였다.

2.2. 표준원액 및 표준용액

Imicyafos 표준품 21.98 mg을 acetonitrile 20 mL에 용해하여 1,000 μg/mL (1,000 ppm)의 표준원액을 조제하고 acetonitrile로 희석하여 0.1, 0.5, 1.0, 2.0 및 5.0 μg/mL의 표준용액을 제조하여 실험에 사용하였다.

2.3. 추출 및 정제

검체를 분쇄하여 균질화한 후 20 g (곡류 및 콩류는 약 1 kg을 혼합하여 표준체 420 μm를 통과하도록 분쇄한 20 g, 과일류·채소류·서류는 약 1 kg을 분쇄한 20 g)을 정밀히 달아 500 mL 톨비이커에 넣었다(곡류 및 콩류는 검체에 distilled water 20 mL를 넣고 30 분간 방치). 여기에 acetone 100 mL를 넣은 후 균질기로 5 분간 균질화하였다. 이를 부흐너깔때기로 감압여과한 후 여액을 1 L 분액깔때기로 옮기고 포화식염수 50 mL와 distilled water 450 mL, n-hexane 100 mL를 차례로 가한 후 5 분간 격렬하게 진탕하고 층이 완전히 분리될 때까지 정치하였다. 아래 수용액층은 별도의 1 L 분액깔때기에 옮기고 n-hexane층은 버린 후 옮긴 수용액층을 dichloromethane 100 mL 및 50 mL로 2회 분배하여 합친 후 이액을 40 ^oC 이하에서 감압농축하여 건고시켜 dichloromethane 10 mL에 용해하였다(곡류 및 콩류 등 지방성 검체의 경우 40 ^oC 이하 수욕상에서 감압농축한 후 잔류물에 미리 acetonitrile로 포화시킨 n-hexane 30 mL를 가하여 녹인 후 acetonitrile층을 250 mL 용량의 분액깔때기에 옮긴다. 이를 미리 n-hexane으로 포화시킨 acetonitrile 30 mL로 2 회 분배하여 acetonitrile 층을 취하여 지방을 제거한다. 이를 dichloromethane 10 mL로 재용해하였다).

안지름 11 mm, 길이 400 mm의 유리칼럼에 Florisil 5 g과 그 위에 2 cm 높이로 sodium sulfate anhydrous를 차례로 건식충진한 후 dichloromethane 50 mL를 가하여 칼럼표면이 노출되기 직전까지 내려주고 위의 dichloromethane으로 용해한 시료용액을 칼럼에 가하여 칼럼 표면이 노출되기 직전까지 내려주었다. Dichloromethane 50 mL와 acetone/dichloromethane (10/90, v/v)용액 50 mL를 차례로 칼럼에 가하여 씻어서 버렸다. 칼럼 표면이 노출되기 직전 acetone/dichloromethane (45/55, v/v)용액 80 mL를 가하여 용리하여 받은 후 40 ^oC 이하 수욕상에서 감압농축한 후 잔류물에 acetonitrile 2 mL를 가하여 최종부피를 2 mL가 되게하여 시험용액으로 사용하였다. 상기 imicyafos 시험법을 flow chart (Fig. 1)로 나타내었다.

Fig. 1.

Flow chart for imicyafos analysis.

2.4. 기기분석

Imicyafos는 HPLC-UVD로 분석하였고, 분석을 위한 파장은 227 nm로 설정하였으며, 기기분석조건은 Table 1에 나타내었다. 시험법의 신뢰성을 확보를 위해 LC-MS (Liquid Chromatograph-Mass Spectrometer)를 이용하여 재확인 과정을 수행하였으며, 이를 위한 기기분석조건은 Table 2에 나타내었다.

Table1.

Instrumental conditions for imicyafos analysis

Table2.

Confirmative conditions for imicyafos

2.5. 실험실내 시험법 검증

본 연구에서 확립한 추출 및 정제 방법과 기기분석 과정을 검증하기 위해 농약을 처리되지 않은 농산물 시료에 2수준(0.02, 0.05 mg/kg) 농도로 imicyafos를 첨가하고 3 회 반복 실험을 수행하여 회수율과 상대표준편차(relative standard deviation, RSD)를 구하였으며, 이를 근거로 시험법의 정량한계(limit of quantification, LOQ)를 구하였다.

2.6. 실험실간 시험법 검증

본 연구에서 확립한 시험법에 대한 실험실간 검증을 하기 위해 시험법 확립 후 작성한 SOP (Standard Operation Procedure)를 부산지방식품의약품안전청과 경인지방식품의약품안전청에 각각 제공하고 동일한 시험을 수행하여 회수율과 상대표준오차 및 정량한계를 구하였다.

3.1. 분석기기선정과 HPLC 분석조건 확인 및 직선성

Imicyafos 분석을 위한 분석기기를 선정하기 위해 증기압, 분자량 등의 물리·화학적 특성을 고려하였다(Table 3). Imicyafos는 증기압이 1.9 × 10⁻⁴ mPa (25 ^oC)로 휘발성이 낮고 분자 구조상에서 질소, 산소원자의 비공유전자쌍과 이중, 삼중결합 사이에서의 전자전이에 의하여 190 nm~220 nm의 단파장을 흡수하는 특성을 가지고 있기 때문에 HPLC-UVD가 적합할 것으로 판단되었다. 표준용액 1.0 μg/mL를 UV spectrophotometer의 210 nm에서 400 nm 범위에서 스캔한 결과, 최적흡수파장으로 227 nm를 확인하였다(Fig. 2). 이동상은 distilled water와 acetonitrile을 사용하였으며 isocratic 조건에서 이동상 비율을 조절하여 측정한 결과, distilled water/acetonitrile (25/75, v/v) 비율에서 가장 우수한 분리가 이루어짐을 확인할 수 있었다. 확립된 기기분석 조건에서 imicyafos의 직선성(linearity)을 구하기 위하여 acetonitrile로 희석하여 제조한 0.1, 0.5, 1.0, 2.0 그리고 5.0 μg/mL의 표준용액을 HPLC-UVD에 주입하여 위에서 제시한 방법으로 분석하였다. Imicyafos의 직선성은 0.1~5.0 μg/mL의 범위에서 상관계수(r²) 0.99997로써 우수한 직선성을 보여주었다(Fig. 3).

Table3.

Physicochemical properties and structure of imicyafos

Fig. 2.

UV spectrophotometric spectrum of imicyafos.

Fig. 3.

Calibration curve of imicyafos standard solutions.

3.2. 추출 및 정제과정의 확립

Imicyafos의 효율적인 추출을 위해 추출용매 선택시 용매에 대한 용해도와 극성도와 같은 imicyafos의 물리·화학적 특성을 고려해야 한다. 또한 분석시료에 처리된 imicyafos의 최적 추출효율을 확인하기 위해서는 matrix가 추출효율에 미치는 영향도 염두해 두어야한다.⁷ 따라서 본 연구에서는 imicyafos의 용매에 대한 용해도와 극성 정도(Log P_ow; 1.64, pH 7, 20 ^oC)를 확인하고 추출효율을 비교한 결과 중간 비극성인 imicyafos의 추출을 위해 비극성 화합물의 추출에 많이 이용되는 acetone을 최적 추출용매로 선정하였다.^8-9 Acetone 추출액으로부터 지방, 산, 색소, 전분 등의 농산물로부터 유래되는 방해성분들을 제거하기 위해 일차적으로 액-액 분배를 실시하였다. 보다 효율적인 추출을 위해 acetone 추출액을 농축하지 않고 포화식염수 50 mL와 distilled water 450 mL, n-hexane 100 mL를 가한 후 액-액 분배를 실시하여 n-hexane층에 존재하는 비극성 불순물을 제거하고 남은 수용액층에 다시 imicyafos가 중간비극성인 특성을 가지기 때문에 dichloromethane을 첨가하여 분석 성분을 비극성 용매인 dichloromethane층으로 이동시켜 극성의 간섭물질을 효과적으로 제거하였다.

농산물로부터 미량의 imicyafos를 분석하기 위해서는 액-액 분배 과정을 거친 후에도 간섭물질을 제거하기 위한 추가 정제과정이 필요하다. 따라서 정제 시에는 용매의 선택에 있어 분석성분에 대한 더 높은 선택성을 요구한다. 본 시험법에서는 컬럼 충진제로 유지, 색소의 용출성이 우수하고 극성의 물질을 넓은 범위에서 흡착하는 특성을 가지는 florisil을 선택하였는데, matrix에서 문제가 되는 간섭물질과 극성물질을 효과적으로 제거할 수 있음을 확인할 수 있었다. Acetone/dichloromethane (10/90, v/v) 용액을 흘려주었을 때 50 mL 용리액까지 imicyafos가 검출되지 않아서 씻는 용매로 사용하였고, 분석 성분에 대한 선택적 용출을 위해 acetone/dichloromethane (45/55, v/v)을 용매로 선정하고 80 mL까지 흘렸을 때 99%의 회수율을 보여 용출 용매로 선정하선정하였다. 이와 같이 각 단계별로 분석 성분에 대한 특성을 파악함으로써 imicyafos 분석을 위한 효율적인 추출 및 정제조건을 확립할 수 있었다.

3.3. 검출한계 및 정량한계

본 연구에서 확립한 시험용액 조제 및 기기시험법을 이용하여 검체 중 imicyafos의 정량한계를 구하였다. 검출한계는 최소검출량이 0.5 ng (S/N=3)으로 아래의 계산식에 따라 0.005 mg/kg으로 나타났다. 정량 한계는 최소검출량이 2 ng (S/N=10)으로 아래의 계산식에 따라 0.02 mg/kg으로 나타났다.

3.4. 실험실내 시험법 검증

회수율 측정은 시험법의 정확성, 재현성 및 효율성 등을 판단하기 위한 과정으로, 본 연구에서는 잔류허용기준이 각각 0.5 mg/kg으로 신설 고시된 수박, 참외를 포함하여 대표 농산물 시료인 곡류 중 현미, 과일류 중 감귤, 서류 중 감자, 채소 중 고추, 콩류 중 대두에 대해 각각 무처리군과 0.02, 0.05 mg/kg의 2 수준 농도로 처리하여 3 반복으로 회수율 실험을 수행하였다. 무처리 검체를 이용하여 간섭물질이 존재하지 않는 동일한 머무름 시간을 확인하였으며, 우수한 분리능과 선택성을 가지는 분리 조건을 확인 할 수 있었다. 회수율 실험 결과는 Table 4에 나타내었다. 측정 결과, 70.0~115.4% 범위의 회수율과 10% 미만의 분석오차를 나타냄으로써 국내기준¹¹ 및 국제식품규격위원회(Codex)의 잔류시험법 기준¹²을 만족함을 확인하였다. EU 가이드라인¹³에 따라 잔류시험법 기준이 만족(회수율: 70~120%, RSD: ≤20%)되는 정량한계(LOQ)는 0.02 mg/kg이었으며, 이는 국제식품규격위원회(Codex) 및 국내에서 권장하는 기준인 잔류허용기준의 1/2 또는 0.05 mg/kg 이하에도 부합하여, 본 시험법의 적합성을 확인할 수 있었다. 회수율 시험을 수행한 결과 크로마토그램을 그림에 나타내었다(Fig. 4).

Table4.

Validation results of an analytical method for the determination of imicyafos in the samples

*Mean values of triplicates with relative standard deviation.

Fig. 4.

HPLC-UVD chromatograms corresponding to watermelon (A) korean melon, (B) mandarin, (C) pepper, (D) potato, (E) soybean, (F) and hulled rice, (G) 1, control; 2, spiked at 0.02 mg/kg; and 3, spiked at 0.05 mg/kg.

3.5. LC-MS를 이용한 시험법의 재확인

LC 시험법을 통한 회수율은 표준품과 동일한 머무름 시간대의 peak 면적으로 측정하기 때문에 분석대상 물질에 대한 정성의 정확성을 확보하기에 어려움이 있다. 따라서 imicyafos 분석을 위해 개발된 시험법에 대한 신뢰성을 확보하고 물질에 대한 정성의 정확성을 검증하기 위해 LC-MS를 이용한 시험법 재확인이 필요하였다. 이러한 LC-MS 분석은 분석대상 성분의 분자구조로부터 유도되는 분자이온의 mass spectrum을 확인함으로써 보다 정확한 정성확인을 가능하게 한다.^7,8 분자량이 304.4인 imicyafos를 50~500 m/z 분자량 범위에서 full scan mass spectrum mode로 분석한 결과(Fig. 5) 정성 및 정량을 위한 imicyafos의 특성이온은 m/z 305가 최적임을 알 수 있었다. 머무름 시간은 3.5 분이었고 positive조건에서 측정되었으며, 특성이온의 m/z값은 Table 5에 나타내었다. 시험법 검증 대상 농산물인 수박, 참외, 고추, 현미, 감귤 및 감자의 모든 시료에 대해 LC-MS로 분석한 결과, 물질에 대한 선택성을 확인함으로써 본 연구에서 개발한 시험법에 대한 높은 신뢰성과 정확성을 확보할 수 있었다.

Fig. 5.

Full scan mass spectrum of imicyafos.

Table5.

Selected-ion of LC-MS for imicyafos

3.6. 실험실간 시험법 검증

실험실내 선택성, 정확성 및 효율성을 확보한 후 시험법에 대한 실험실간 재현성을 확인하기 위해서는 검증이 필요하다. 이에 본 연구에서는 부산지방식품의 약품안전청과 경인지방식품의약품안전청에 본 시험법 SOP를 제공하고 동일한 조건에서 분석을 진행하여 실험실간 검증을 실시하였다. 코덱스 가이드라인¹²에서 제공하는 실험실간 편차(RSD_R; Relative Standard Deviation on reproducibility)는 >0.01 mg/kg, ≤0.1 mg/kg범위의 농도에서 32% 이하로 본 연구에서는 0.02 및 0.05 mg/kg 농도에서 편차가 3.9~14.9%로 조사되어 실험실간 정밀성이 매우 우수함을 확인하였으며, 이를 통해 시험법이 매우 견고함을 유추할 수 있었다. 또한 실험실내 편차(RSDr; Relative Standard Deviation on repeatability)를 20% 이하로 제안하고 있는데, 검증 결과 0.02 및 0.05 mg/kg 농도에서 모두 1.0~9.9%로 조사되어 오차범위 또한 적합함을 확인할 수 있었다(Table 6). 따라서 본 시험법은 imicyafos 분석을 위한 공정 시험법으로 활용할 수 있을 것으로 판단되었다.

Table6.

Inter-laboratory validation results of an analytical method for imicyafos in the samples

*RSD_r : intra-laboratory validation

**RSD_R : inter-laboratory validation